私は百合の香りが非常に好きだ、そして、鉢植えから地面の土に植え替えて、庭の中で花の輝きが永遠に続くように育てている。
私はそれが有力な癌治療になるとは思っても見なかった。
しかし、これに限らずたくさんの事実関係から言えることがあるともう。

科学者がそれが真実であるとわかるまでの間に、私が信じている「真実」をあなたと共有したい
: 「地球上で今日生きているすべての植物は、薬効成分を持っている。」
さもなければ、それが薬効成分を持っていない場合、植物は地球上で生き残ることができない。
そして我々の仲間の「ヒト」に関しては、十分に慎重に観察すると、すべての人々は「愛と美」であるというのも等しく真実である。

6月8日J Agric Food Chem. 2011;59の(11):5945-54。5月11日Epub 2011。
植物病原真菌(ハイイロカビ属灰白質)による白百合(テッポウユリThunb。)のステロイド性配糖体の抗真菌性の活性と菌類の代謝。
Munafo Japan paper Jr、Gianfagna TJ。
ソース
プラント生物学と病理学部、Rutgers-Theニュージャージー州立大学、59本のダドリー道、ニューブランズウィック、ニュージャージー08901、米国。
要約
ハイイロカビ属灰白質ペルシアFr. 植物は、病原真菌と白百合(テッポウユリThunb。)の花胴枯れ病の原因の生物である。白百合は、ステロイド性配糖体(白百合の設備病原相互作用で役割を果たす可能性がある合成物)の豊かな供給源である。5つのステロイド性配糖体(2つのステロイド性グリコアルカロイドと3つのfurostanolサポニンを含む)は、L. longiflorumから分離されて、生体外プレート分析法を用いてB.灰白質に対して菌類の発育阻止活性のために評価された。合成物の全ては、菌類の発育阻止活性を示した;ステロイド性グリコアルカロイド((22R,25R)-spirosol-5-エヌ-3β-イルO-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-[6-O-アセチル-β-D-glucopyranosyl-(1→4)]-β-D-グルコピラノシド(2))の終端のブドウ糖のしかしながら、C-6インチの自然なアセチル化』は、B.灰白質によって合成物の代謝の率を阻害することによって、抗真菌性の活性を増加させた。グリコアルカロイドのアセチル化は、病原体によって機序を解毒することの進化への植物防御反応である可能性がある。B.灰白質によるステロイド性グリコアルカロイドの生体内変換は、いくつかの菌類の代謝産物の隔離と特徴描写に至った。モデル・システムで発生した菌類の代謝産物は、LC-MSによってポリープで汚染される白百合組織でも特定された。加えて、ステロイド性グリコアルカロイド((22R,25R)-spirosol-5-エヌ-3β-イルO-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-β-D-グルコピラノシド(6))は、初めて、ステロイド性グリコアルカロイドの両方の菌類の代謝物質として、そして、L. longiflorumの天産物として特定された。

生命科学
第76巻、Issue 6、2004年12月24日、Pages 671-683
医薬の活性による白百合花の構成要素
• Jayaraj A. Francisa、
• Bioactive Natural ProductsとPhytoceuticals、Horticultureと全国Food SafetyとToxicologyセンター省、ミシガン州立大学、イースト・ランシング、ミシガン48824、米国
• Veterinary Medicine、ミシガン州立大学、イースト・ランシング、ミシガン48824、米国のbカレッジ

植物化学
第37巻、Issue 1、1994、Pages 227-232
植物生化学の国際的な学術誌
テッポウユリとそれらの抗腫瘍性のプロモーター作用の球からのステロイド性サポニン
• ヨシヒロMimakia、 ,
• 東京薬科大学、1432-1、ホリノウチ、八王子、東京192-03、日本
• b Biochemistry、京都府立医科大学、465、河原町-ヒロコウジ、上京区、京都602、日本省
• c Cancer Prevention Division、国立がんセンター研究所、5-1-1、築地、中央区、東京104、日本
• http://dx.doi.org/10.1016/0031-9422(94)85030-5,
******************************
2月9日J Agric Food Chem. 2011;59の(3):995-1004。1月14日Epub 2011。
LC-MS/MSによる白百合(Liliumlongiflorum Thunb。)の異なる器官のステロイド性配糖体の定量分析。
Munafo Japan paper Jr、Gianfagna TJ。
ソース
プラント生物学と病理学(ラトガーズ)部-ニュージャージー、ニューブランズウィック、ニュージャージー08901、米国州立大学。
要約
白百合(テッポウユリThunb。)の球は食物と医学としてアジアで定期的に消費される、そして、美しい白い花は世界的に魅力的な装飾物として評価される。白百合は、steroidalglycosides(ユリを伝統的な医薬の使う自由のいくつかの原因となる可能性がある一群の合成物)の豊かなもとである。動物のおよび人間の健康の役割ステロイド性配糖体についての最近の報告の見た目から、植物から派生した食品のこれらの天産物の集中に対する関心は、増加している。L. longiflorumのthedifferentな器官において、(MRM)様式をモニターしている複数の反応で実行されるLC-MS/MS方法が、2つのステロイド性グリコアルカロイドと3つのfurostanolサポニンの定量分析のために使われた。それぞれ、全5つのステロイド性配糖体の最高濃度は、12.02の±0.36、10.09の±0.23と花芽、下部の茎と葉の9.36の±0.27mg/g乾燥重量であった。それぞれ、2つのステロイド性グリコアルカロイドの最高濃度は、8.49の±0.3、6.91の±0.22と花芽、葉と球の5.83の±0.15mg/g乾燥重量であった。対照的に、それぞれ、3つのfurostanolサポニンの最も高い集中は、4.87の±0.13、4.37の±0.07と下部の茎、肥満したルーツと花芽の3.53の±0.06mg/g乾燥重量であった。ステロイド性グリコアルカロイドは、ルーツ以外は植物器官の全てで、furostanolサポニンと比較するとより高い集中で検出された。furostanolサポニンに対するthesteroidalなグリコアルカロイドの比率は、光を浴びる植物臓器でより高くて、地上の器官から地下器官まで割合で減少した。その上、ほとんど染色が鱗茎葉の葉肉にあって、鱗茎葉の組織学的染色で、基板、鱗茎葉表面細胞と維管束で差動furostanol蓄積がみられた。第1のものは洞察をこれらの合成物が食物のために摘出と精製方法論の発達で植物生物学と化学生態環境と援助で演ずる役割へ発達させて進むL. longiflorumisで異なる器官のステロイド性配糖体の配布の理解、健康と産業アプリケーション。本研究において、(22R,25R)-spirosol-5-エヌ-3β-イルO-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-β-d-glucopyranosyl-(1→4)-β-d-グルコピラノシド、(22R,25R)-spirosol-5-エヌ-3β-イルO-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-[6-O-アセチル-β-d-glucopyranosyl-(1→4)]-β-d-グルコピラノシド、(25R)-26-O-(β-d-glucopyranosyl)furost-5-ene-3β,22α,26-トリオール3-O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-β-d-glucopyranosyl-(1→4)-β-d-グルコピラノシド、(25R)-26-O-(β-d-glucopyranosyl)furost-5-ene-3β,22α,26-トリオール3-O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-l-arabinopyranosyl-(1→3)-β-d-グルコピラノシドと(25R)-26-O-(β-d-glucopyranosyl)furost-5-ene-3β,22α,26-トリオール3-O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-l-xylopyranosyl-(1→3)-β-d-グルコピラノシドは、初めてL. longiflorumの異なる臓器で定量化された。

The Easter Lilly – another lovely (safe and effective) remedy to consider
J Agric Food Chem. 2011 Jun 8;59(11):5945-54. Epub 2011 May 11.
Antifungal activity and fungal metabolism of steroidal glycosides of Easter lily (Lilium longiflorum Thunb.) by the plant pathogenic fungus, Botrytis cinerea.
Munafo JP Jr, Gianfagna TJ.
Source
Department of Plant Biology and Pathology, Rutgers-The State University of New Jersey, 59 Dudley Road, New Brunswick, New Jersey 08901, USA.
Abstract
Botrytis cinerea Pers. Fr. is a plant pathogenic fungus and the causal organism of blossom blight of Easter lily (Lilium longiflorum Thunb.). Easter lily is a rich source of steroidal glycosides, compounds which may play a role in the plant-pathogen interaction of Easter lily. Five steroidal glycosides, including two steroidal glycoalkaloids and three furostanol saponins, were isolated from L. longiflorum and evaluated for fungal growth inhibition activity against B. cinerea, using an in vitro plate assay. All of the compounds showed fungal growth inhibition activity; however, the natural acetylation of C-6”’ of the terminal glucose in the steroidal glycoalkaloid, (22R,25R)-spirosol-5-en-3β-yl O-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-[6-O-acetyl-β-D-glucopyranosyl-(1→4)]-β-D-glucopyranoside (2), increased antifungal activity by inhibiting the rate of metabolism of the compound by B. cinerea. Acetylation of the glycoalkaloid may be a plant defense response to the evolution of detoxifying mechanisms by the pathogen. The biotransformation of the steroidal glycoalkaloids by B. cinerea led to the isolation and characterization of several fungal metabolites. The fungal metabolites that were generated in the model system were also identified in Easter lily tissues infected with the fungus by LC-MS. In addition, a steroidal glycoalkaloid, (22R,25R)-spirosol-5-en-3β-yl O-α-L-rhamnopyranosyl-(1→2)-β-D-glucopyranoside (6), was identified as both a fungal metabolite of the steroidal glycoalkaloids and as a natural product in L. longiflorum for the first time.

Life Sciences
Volume 76, Issue 6, 24 December 2004, Pages 671–683
Constituents in Easter lily flowers with medicinal activity
• Jayaraj A. Francisa,
• a Bioactive Natural Products and Phytoceuticals, Department of Horticulture and National Food Safety and Toxicology Center, Michigan State University, East Lansing, Michigan 48824, United States
• b College of Veterinary Medicine, Michigan State University, East Lansing, Michigan 48824, United States

Phytochemistry
Volume 37, Issue 1, 1994, Pages 227–232
The International Journal of Plant Biochemistry
Steroidal saponins from the bulbs of Lilium longiflorum and their antitumour-promoter activity
• Yoshihiro Mimakia, ,
• a Tokyo College of Pharmacy, 1432-1, Horinouchi, Hachioji, Tokyo 192-03, Japan
• b Department of Biochemistry, Kyoto Prefectural University of Medicine, 465, Kawaramachi-Hirokoji, Kamigyo-ku, Kyoto 602, Japan
• c Cancer Prevention Division, National Cancer Center Research Institute, 5-1-1, Tsukiji, Chuo-ku, Tokyo 104, Japan
• http://dx.doi.org/10.1016/0031-9422(94)85030-5,
******************************
J Agric Food Chem. 2011 Feb 9;59(3):995-1004. Epub 2011 Jan 14.
Quantitative analysis of steroidal glycosides in different organs of Easter lily (Liliumlongiflorum Thunb.) by LC-MS/MS.
Munafo JP Jr, Gianfagna TJ.
Source
Department of Plant Biology and Pathology, Rutgers – The State University of New Jersey, New Brunswick, New Jersey 08901, USA.
Abstract
The bulbs of the Easter lily ( Lilium longiflorum Thunb.) are regularly consumed in Asia as both food and medicine, and the beautiful white flowers are appreciated worldwide as an attractive ornamental. The Easter lily is a rich source of steroidalglycosides, a group of compounds that may be responsible for some of the traditional medicinal uses of lilies. Since the appearance of recent reports on the role steroidal glycosides in animal and human health, there is increasing interest in the concentration of these natural products in plant-derived foods. A LC-MS/MS method performed in multiple reaction monitoring (MRM) mode was used for the quantitative analysis of two steroidal glycoalkaloids and three furostanol saponins, in thedifferent organs of L. longiflorum. The highest concentrations of the total five steroidal glycosides were 12.02 ± 0.36, 10.09 ± 0.23, and 9.36 ± 0.27 mg/g dry weight in flower buds, lower stems, and leaves, respectively. The highest concentrations of the two steroidal glycoalkaloids were 8.49 ± 0.3, 6.91 ± 0.22, and 5.83 ± 0.15 mg/g dry weight in flower buds, leaves, and bulbs, respectively. In contrast, the highest concentrations of the three furostanol saponins were 4.87 ± 0.13, 4.37 ± 0.07, and 3.53 ± 0.06 mg/g dry weight in lower stems, fleshy roots, and flower buds, respectively. The steroidal glycoalkaloids were detected in higher concentrations as compared to the furostanol saponins in all of the plant organs except the roots. The ratio of thesteroidal glycoalkaloids to furostanol saponins was higher in the plant organs exposed to light and decreased in proportion from the aboveground organs to the underground organs. Additionally, histological staining of bulb scales revealed differential furostanol accumulation in the basal plate, bulb scale epidermal cells, and vascular bundles, with little or no staining in the mesophyll of the bulb scale. An understanding of the distribution of steroidal glycosides in the different organs of L. longiflorumis the first step in developing insight into the role these compounds play in plant biology and chemical ecology and aids in the development of extraction and purification methodologies for food, health, and industrial applications. In the present study, (22R,25R)-spirosol-5-en-3β-yl O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-β-d-glucopyranosyl-(1→4)-β-d-glucopyranoside, (22R,25R)-spirosol-5-en-3β-yl O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-[6-O-acetyl-β-d-glucopyranosyl-(1→4)]-β-d-glucopyranoside, (25R)-26-O-(β-d-glucopyranosyl)furost-5-ene-3β,22α,26-triol 3-O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-β-d-glucopyranosyl-(1→4)-β-d-glucopyranoside, (25R)-26-O-(β-d-glucopyranosyl)furost-5-ene-3β,22α,26-triol 3-O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-l-arabinopyranosyl-(1→3)-β-d-glucopyranoside, and (25R)-26-O-(β-d-glucopyranosyl)furost-5-ene-3β,22α,26-triol 3-O-α-l-rhamnopyranosyl-(1→2)-α-l-xylopyranosyl-(1→3)-β-d-glucopyranoside were quantified in the different organs of L. longiflorum for the first time.